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2014-02-05T08:11:16Z

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{{百科小图片|bkad2.jpg|}}[[荧光原位杂交]]方法是一种[[物理图谱]]绘制方法，使用[[荧光素]]标记[[探针]]，以检测探针和分裂中期的[[染色体]]或[[分裂间期]]的[[染色质]]的杂交。

荧光原位杂交(fluorescence in situ hybridization, FISH)是在20世纪80年代末在[[放射性]][[原位杂交技术]]的基础上发展起来的一种非放射性[[分子]]细胞遗传技术,以[[荧光标记]]取代[[同位素标记]]而形成的一种新的[[原位杂交]]方法,探针首先与某种介导分子(reporter molecule)结合,杂交后再通过[[免疫细胞化学]]过程连接上[[荧光染料]].FISH的基本原理是将DNA(或RNA)探针用特殊的[[核苷酸]]分子标记,然后将探针直接杂交到染色体或DNA[[纤维]]切片上,再用与荧光素分子[[偶联]]的[[单克隆抗体]]与探针分子特异性结合来检测DNA序列在染色体或DNA纤维切片上的定性、定位、相对定量分析.FISH具有安全、快速、灵敏度高、探针能长期保存、能同时显示多种颜色等优点,不但能显示中期分裂相,还能显示于间期核.同时在荧光原位杂交基础上又发展了多彩色荧光原位杂交技术和染色质纤维荧光原位杂交技术.

对于利用rRNA的荧光原位杂交来说，如下原因可导致较低的荧光信号强度：

较低的[[细胞核]]糖体含量

较低的[[细胞]]周边的通透性

较低的目标序列可接触性（由于rRNA的折叠产生的[[构象]]，有些位置与rRNA分子内其他链或其他rRNA或[[蛋白]]紧密接触，从而使探针无法和目标序列杂交）

为检验细胞中的目标序列是否容易被探针杂交，及测试最佳杂交温度，可利用“克隆荧光原位杂交”(clone-FISH)进行试验：将rRNA[[基因]]结合入[[质粒]]，转化至[[大肠杆菌]]中表达，构成[[核糖体]]，再用荧光标记的探针杂交。

FISH可与流式细胞术联用，对特定荧光标记的细胞进行计数或者分离。

荧光原位杂交（FISH）技术简介

1974年Evans首次将[[染色体显带技术]]和[[染色体原位杂交]]联合应用，提高了定位的准确性。20世纪70年代后期人们开始探讨荧光标记的原位杂交，即FISH技术。1981年Harper成功地将单拷贝的DNA序列定位到G[[显带]][[标本]]上，标志着染色体定位技术取得了重要进展。20世纪90年代，随着[[人类基因组计划]]的进行，由于绘制高分辨人类基因组图谱的需要，FISH技术得到了迅速的发展和广泛应用。

1．原理

FISH(fluorescence in situ hybridization)技术是一种重要的非放射性原位杂交技术。它的基本原理是:如果被检测的染色体或DNA纤维切片上的靶DNA与所用的[[核酸]]探针是[[同源]]互补的，二者经变性-退火-[[复性]]，即可形成靶DNA与核酸探针的杂交体。将核酸探针的某一种核苷酸标记上报告分子如[[生物素]]、[[地高辛]]，可利用该报告分子与荧光素标记的特异[[亲和素]]之间的[[免疫化学]]反应，经荧光检测体系在镜下对待测DNA进行定性、定量或相对定位分析。

2．实验流程

FISH样本的制备→探针的制备→探针标记→杂交→（[[染色体显带]]）→[[荧光显微镜]]检测→结果分析。

3．特点

原位杂交的探针按标记分子类型分为[[放射性标记]]和非放射性标记。用同位素标记的放射性探针优势在于对制备样品的要求不高，可以通过延长曝光时间加强信号强度，故较灵敏。缺点是探针不稳定、自显影时间长、[[放射线]]的[[散射]]使得空间分辨率不高、及[[同位素]]操作较繁琐等。采用荧光标记系统则可克服这些不足，这就是FISH技术。FISH技术作为非放射性检测体系，具有以下优点:1、荧光[[试剂]]和探针经济、安全；2、探针稳定，一次标记后可在两年内使用；3、实验周期短、能迅速得到结果、特异性好、定位准确；4、FISH可定位长度在1kb的DNA序列，其灵敏度与放射性探针相当；5、多色FISH通过在同一个核中显示不同的颜色可同时检测多种序列；6、既可以在玻片上显示[[中期染色体]]数量或结构的变化，也可以在悬液中显示间期染色体DNA的结构。

缺点：不能达到100%杂交，特别是在应用较短的cDNA探针时效率明显下降。

4．应用

该技术不但可用于已知基因或序列的染色体定位，而且也可用于未克隆基因或[[遗传标记]]及[[染色体畸变]]的研究。在基因定性、定量、整合、表达等方面的研究中颇具优势。　　
==荧光原位杂交技术的发展历程==
1 FISH 技术检测[[位点]]数目及检测目标的发展

在FISH 技术基本确立之后，FISH 不仅用于单基因或核酸检测，FISH 技术的进一步发展扩展到多色FISH [[多基因]]位点同时检测，从基因检测发展到[[基因组]]、染色体、活细胞中转录产物mRNAs 原位检测以及组织水平的核酸检测，并且在今后的研究中还有可能应用到整个生物体的检测。早期的探针较大，是通过载体的[[增殖]]、[[缺口平移]]法、体外[[转录]]法和随机[[引物]]DNA 合成法来制备以获得特异性杂交克隆。然而大片断的探针通常带有[[重复序列]]造成高荧光背景，采用未标记的核酸进行[[预处理]]使其与非特异性位点结合用于抑制非特异性杂交可以克服上述问题，同时也使得研究者扩大了检测目标，实现了整条染色体[[染色]]。在细胞遗传学上FISH 技术在[[染色体分析]]方面也因此得到了显著的提高。如通过比较基因组杂交（Comparativegenomic hybridization）用于检测染色体区域的缺失和重复。大片段探针一旦和样品非特异性结合就会形成一个信号，混淆染色体上基因的检测，就需要剪切成小片段＜200核苷酸。现在检测手段的提高以及检测软件的不断发展使得FISH技术的检测要求越来越低，灵敏度越来越高。精确的计算机图片处理算法的不断改进形成了亚显微水平的探针高分辨技术。随着检测目标越来越小，FISH技术已用于隐蔽的亚[[端粒]][[核型]]基因重排和精确的染色体作图及单拷贝mRNA的检测。

FISH 检测范围的扩大，使得FISH 技术的应用在20 世纪90 年代急速增长。由FISH 技术应用而形成的分支技术实现了越来越多的不同类型位点同时检测。首先是采用不同的荧光素来检测多位点，如双色荧光用于检测特异的核酸序列，每一条染色体、基因或者[[转录产物]]分别由一种可以分辨的荧光信号来表示。之后是采用两种色彩译码方案进一步扩大了FISH 应用范围。译码方案主要是针对色彩比例，即每一种颜色在总颜色中所占的比例来描绘多位点。前述的每一种方法，或是两种方法的结合都已经将可检测位点多达12 个。采用计算机翻译的五色方案可同时检测出人类所有染色体代表着FISH 技术多位点检测的里程碑。尽管可以采用多种方法观测到mRNAs，但是FISH 对整个转录产物的原位分析似乎更有应用前景。色彩译码技术已经实现了对整个组织的检测。

2 FISH 技术的定量分析阶段

Pinkel 等（1986）首次将荧光图像定量分析用于基本[[细胞遗传]]检测，采用双色激发块装置照相机检测荧光信号，而且定量分析技术很快用于了mRNA 检测。荧光检测的关键是信号的重现性、无规律性及背景的[[自发荧光]]。不仅不同的样品之间荧光不同，而且同一[[载玻片]]上的材料或者同样的细胞都有可能显示出不均衡的荧光。目前已有多种方法用于消除一些组织中的自发荧光：如样品制备过程中，采用的消除自发荧光试剂包括硼[[氢化钠]]或者采用光照[[辐射]]进行预处理以消除非特异性背景信号。这些消除自发荧光的方法并不完全有效，通常在进行图像分析时通过计算机算术除去自发荧光信号。荧光图像的[[光谱]]数据包括真正的信号和许多杂噪，分别进行分析并且通过单独的光谱组分分析除掉杂噪数据。多色FISH 有自身的限制，包括不同的荧光强度和颜色重叠。但是通过计算机算法分析平衡了多色图像，包括强度变化和自动纠正信号重叠。

FISH图像自身的限制并没有影响到自动破译算法的发展。采用序列较大探针进行DNA 位点检测和多色[[荧光计]]数算法辅助病理学家实现了自动化分析。此外，检测探针[[试剂盒]]和点计数方法的应用为便捷的检测结果提供了一个。尽管多种方法已经用于分析或优化自动细胞检测系统，人工的细胞病理检测仍是可信度高的组织分析方法。然而，细胞制备、鉴别、固定介质上细胞样品计算机化检测在未来的医学诊断中的高效益性不容忽视，快速检测细胞内的分子信号只有通过计算机辅助方法进行检测。现在，自动化检测程序已经扩展到采用多基因转录模型检测特异的DNA 簇和转录位点以确定功能细胞的状态。

3 FISH 技术检测领域的发展

鉴于FISH 起始阶段的发展主要是探针类型和检测位点的扩展，荧光检测技术将来的发展可能包括检测领域的扩展。荧光图像[[临床诊断]]应用需要在检测体系上进一步提高，如探针的结合，照相和分析的自动化，因此避免了不同操作间的误差。样品厚度是荧光显微镜检测样品类型的一个限制因素。近来的[[激光]][[共聚焦显微镜]]和光学X[[射线]][[断层]]摄影技术要求样品厚度达到1~2mm。一种改进的光学投射X 显微断层摄影技术可以获取到15mm 厚样品的图像扩大了[[生物学]]和诊断样品的检测范围。活细胞的RNAs FISH 技术检测也有报道。既可以采用体内释放的荧光集团也可以采用杂交后探针的荧光素进行检测。这两种新方法都可以降低非特异性标记探针存在时的高背景（如活细胞），可以用于追踪mRNA 的合成和转移途径。这些方法较绿色[[荧光蛋白]]（Green fluorescence protein, GFP）更易于检测不同靶分子。相对于GFP 活[[细胞原位杂交]]检测，FISH 易受到细胞内合成探针的影响。FISH 需要进一步的改进以降低活体[[基因表达]]检测时的干扰背景，避免细胞内自身杂交物的干扰。其实完全可以不必考虑FISH 检测和荧光检测蛋白技术的差异，将FISH 技术和荧光蛋白技术结合起来可以同时检测目的核酸和蛋白。

多[[光子]][[显微技术]]的应用进一步扩大了荧光图像的应用范围。采用多光子[[显微镜]]，激光块可以发射光子[[聚焦]]于显微镜两到三次激发目的荧光素。采用近红外激发光可以更深层次穿透生物样品，比可见光对活体样品造成的[[毒性]]低。这种新方法的应用已将荧光图像用于活体系统的检测，甚至整个动物体。由于还不能合成生物体标记探针，因此目前生物体内荧光图像的应用只限于检测荧光分子或生物体自发荧光。生物组织在正常的[[生理]]或者[[病理]]生理过程中产生的自发荧光信号可以作为一种重要的诊断信号。一旦生物体探针成为可能，将会成为鉴别特异核酸序列，进行非入侵诊断，获取诊断图像的一种有力辅助手段。

[[分类:生物]][[分类:分子生物学]][[分类:生物信息学]][[分类:遗传学]]

荧光原位杂交 - 版本历史

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