112.247.109.102：以“毛细胞为感受声波刺激的感觉上皮细胞。分有内、外毛细胞，内毛细胞在内柱细胞的内侧排成一列，外毛细胞有3～5列...”为内容创建页面

2014-01-26T04:57:40Z

以“毛细胞为感受声波刺激的感觉上皮细胞。分有内、外毛细胞，内毛细胞在内柱细胞的内侧排成一列，外毛细胞有3～5列...”为内容创建页面

新页面

毛细胞为感受声波刺激的[[感觉上皮]][[细胞]]。分有内、外毛细胞，内毛细胞在内柱细胞的内侧排成一列，外毛细胞有3～5列。内、外毛细胞的底端分别由内指和外指细胞承托着，并与螺旋[[神经节细胞]]的周围突，形成[[突触]]联系。毛细胞的上面有一胶质盖膜，近年来，在扫描电镜下已证实，毛细胞上的[[纤毛]]是插入盖膜胶质内，[[螺旋器]]即随膜螺旋板而摆动。　　
==毛细胞的培养==
实验以小白鼠为对象，利用[[组织培养]]的方法，观测[[新霉素]]对[[前庭]]毛细胞破坏的[[超微结构]]特征及毛细胞数定量分析，探讨培养条件下毛细胞破坏后能否再生及再生细胞的形态特征及时间过程。

一、材料和方法

1. 取材：生后15 d的昆明鼠60只，雌雄兼用，上海医科大学实验动物中心提供。动物断头，75%[[乙醇]]中浸5 min，置冷Hank液的[[培养皿]]中，于[[解剖显微镜]]下，分离[[耳蜗]]，打开前庭，取出[[椭圆囊]]，打开顶部，移去耳石膜。

2. 组织培养：培养皿底涂鼠尾胶，[[培养液]]2 ml（Medium-199+10%胎[[牛血清]]），每皿3个[[培养物]]，置37℃ 5% CO2[[培养箱]]中培养。[[实验组]]使用含1 mmol/L新霉素培养液2 ml，24 h后弃原培养液，用无新霉素的Medium-199液漂洗后用含10%胎牛血清的Medium-199培养液2 ml，置培养箱中培养，48 h更换一半培养液。100个[[标本]]分别培养1、2、3、4(各15个标本)和5、20 d(各20个标本)。对照组不使用新霉素，20个标本培养20 d。

3. 电镜观察：分别按常规制作标本，在S-520型扫描电镜和JEM1200EX透射电镜下观察、摄片。

4. 统计学方法：实验组5、20 d组微纹区的毛细胞数比较采用t检验。

毛细胞的培养结果及其讨论

二、结果

1. 形态学的变化：扫描电镜见正常毛细胞呈有序排列，由[[支持细胞]]分隔，I型毛细胞表面积大，[[静纤毛]]多而长，II型毛细胞表面积较小，静纤毛少、短；微纹区为穿越椭圆囊中央的毛细胞条带区，多为I型毛细胞，外周为I型与II型毛细胞相间排列。新霉素对毛细胞破坏以微纹区最严重，并向外扩展，24 h后见损伤毛细胞静纤毛紊乱、融合、倒伏、脱落，2 d的[[表皮]]板尚存留(图1)，5 d表皮板完全消失，由支持细胞所替代(图2)；细胞顶面扩大，布满[[微绒毛]]，该区毛细胞基本消失。20 d后毛细胞破坏区域，出现了丛状、表面积小的细短静纤毛或伴较长[[动纤毛]]的不成熟毛细胞(图3)，类似于发育期间的静纤毛束及鸟类毛细胞再生时静纤毛的表现，与II型毛细胞相似，该区I型毛细胞几乎不存在。透射电镜检查可见正常微纹区毛细胞静纤毛粗、长，[[微丝]]密度较高，表皮板厚，小根明显；再生毛细胞静纤毛细、短，微丝密度低，表皮板及小根不明显(图4)。

2. 定量分析：正常培养20 d微纹区平均2000μm毛细胞数为(59.3±2.7)个(±s，下同)，大部分为I型毛细胞，平均(52.8±1.9)个，200 μm II型毛细胞为(6.5±1.1)个。实验组5 d与20 d微纹区毛细胞数分别为0.9±0.16（统计18个标本）和4.3±0.48（统计18个标本），t检验，P＜0.001。

三、讨论

本组实验对新霉素致椭圆囊微纹区静纤毛束的损伤及恢复进行观察。体外培养发现微纹区毛细胞在[[耳毒性]][[药物作用]]后开始破坏、消失，5 d时损伤达到最大程度，该区毛细胞基本消失，20 d时，该区有新的不成熟静纤毛出现。新增的不成熟静纤毛的毛细胞是否为[[表面结构]]损伤的毛细胞经修复所致，而非再生结果？本组实验显示：耳毒药引起的损害表现退变的毛细胞体内有大量空泡形成，细胞间的[[紧密连接]]扩大，该过程先于静纤毛消失，提示毛细胞在静纤毛消失前已严重破坏，且只有在发育阶段的毛细胞才有修复静纤毛的能力。因此，新出现的呈现不成熟静纤毛的毛细胞非损伤毛细胞的修复所致，而是毛细胞再生。

本组结果显示毛细胞破坏后为支持细胞所代替，以后出现新的毛细胞，提示支持细胞可能是再生毛细胞的[[前体细胞]]。有研究发现部分不成熟的毛细胞无H标记，推测这些毛细胞是直接经支持细胞转化而来，而未经[[有丝分裂]]。本组实验显示毛细胞破坏区域由支持细胞占据，这些支持细胞是分裂[[增生]]或原有的无法证实。 图1　新霉素作用后2d组织培养的小白鼠椭圆囊微纹区扫描电镜相。紊乱、倒伏的静纤毛；↑融合的静纤毛；△存留表皮板。×4 000　图2　新霉素作用后5d组织培养的小白鼠椭圆囊微纹区扫描电镜相。表皮板消失，支持细胞顶面扩大(S)，毛细胞消失。×4 000　图3　新霉素作用后组织培养20d的小白鼠椭圆囊微纹区扫描电镜相。再生毛细胞(△)有不成熟的静纤毛。×2 000　图4　透射电镜观察。a正常细胞微丝密度高，表皮板厚，有小根(↑)；b再生毛细胞微丝密度低，表皮板及小根不明显(▲)×5 000　　
==毛细胞的最新研究成果==
北京时间3月31日消息,英国科学家在实验室里用[[干细胞]]培育出了[[内耳]]毛细胞，为[[耳聋]]患者恢复听力带来了希望。

英国谢菲尔德大学的研究人员已经通过人类干细胞培育出了听力所必须的这种复杂的毛细胞和[[神经细胞]]。他们发现能使用人类[[流产]][[胎儿]]内耳的干细胞培育出极其有用的毛细胞。科学家们希望，他们能使用这种细胞为耳聋患者进行[[细胞移植]]，取代[[神经性耳聋]]患者已受损的毛细胞和神经细胞。神经性耳聋是最常见的耳聋之一，占耳聋患者总数的90%，患神经性耳聋的患者超过600万人。

对神经性耳聋患者来说，目前唯一方法是[[植入]]人工电子耳蜗，但是，这些电子装置并不能恢复所有听力。负责这项研究的马希洛.里维塔说：“赋予我们听力的毛细胞和神经细胞只在[[胚胎发育]]期生成。一旦受损或者失去就无法再生。再生或者取代那些受损的毛细胞和神经细胞的治疗需要显而易见。”

研究人员从流产胎儿的耳蜗获取干细胞。对那些出生后不久就失去听力——这就是我们的身体不能修复损伤的原因——的患者来说，这些干细胞拥有转变为他们助听器的能力。里维塔和他的研究组发现，他们能在实验室培育这些干细胞并把它们培育成毛细胞。

现在，他们正在对动物进行测试，看[[移植]]这些细胞是否能恢复听力。他还希望能通过其他干细胞来源如[[骨髓]]培育干细胞。但是，他警告说在人类患者能移植干细胞恢复听力之前可能需要至少10年的时间。他说：“在短期内，这些细胞还为我们提供了研究人类听力的良好模式以及新[[疗法]]对患者的可能效果。”

毛细胞的作用是把声音转化为送给[[大脑]]的电子刺激。在声波经过的时候，这些看起来从[[细胞表面]]长出的小毛会动起来，这种运动会把电子信号经由[[神经]]传给大脑。英国皇家国家失聪人士研究所[[生物医学]]研究主任拉斐.霍尔默博士说：“目前还没有恢复永久性听力损失的疗法，因此，这种方法对数百万失聪者来说有着潜在的重要性。”

[[分类:生物学]]

毛细胞 - 版本历史

112.247.109.102：以“毛细胞为感受声波刺激的感觉上皮细胞。分有内、外毛细胞，内毛细胞在内柱细胞的内侧排成一列，外毛细胞有3～5列...”为内容创建页面